古朵带您了解，蛋白含量测定方法-Bradford法

  蛋白含量测定方法-Bradford法（考马斯亮蓝法）

  原理：这一方法基于考马斯亮蓝G-250有红蓝两种不同的形式。在一定浓度的乙醇及酸性条件下，可配成淡红色的溶液，当与蛋白质结合后，产生蓝色化合物，反应迅速而稳定。反应化合物在465-595nm处有zui大的光吸收值，化合物颜色的深浅与蛋白浓度的高低成正比关系，因此可检测595nm的光吸收值的大小计算蛋白的含量。

  试剂：

  （1）标准蛋白质溶液，牛血清清蛋白(BSA)，配制成1.0mg/ml和0.1mg/ml的标准蛋白质溶液。

  （2）考马斯亮兰G―250染料试剂：称100mg考马斯亮兰G―250，溶于50ml 95%的乙醇后，再加入120ml 85%的磷酸，用水稀释至1升。

  实验方法：

  （1）取16支试管，1支作空白，3支留作未知样品，其余试管分为两组按表中顺序，分别加入样品、水和试剂，即用1.0mg/ml的标准蛋白质溶液给各试管分别加入：0、0.01、0.02、0.04、0.06、0.08、0.1ml，然后用无离子水补充到0.1ml。zui后各试管中分别加入5.0ml考马斯亮兰G―250试剂，每加完一管，立即在旋涡混合器上混合（注意不要太剧烈，以免产生大量气泡而难于消除）。未知样品的加样量见下表中的第8、9、10管。

  （2）加完试剂2~5分钟后，即可开始用比色皿，在分光光度计上测定各样品在595nm处的光吸收值A595，空白对照为第1号试管，即0.1mlH2O加5.0mlG―250试剂。

  注意：不可使用石英比色皿（因不易洗去染色），可用塑料或玻璃比色皿，使用后立即用少量95%的乙醇荡洗，以洗去染色。塑料比色皿决不可用乙醇或丙酮长时间浸泡。

  （3）用标准蛋白质量（mg）为横座标，用吸光度值A595为纵座标，作图，即得到一条标准曲线。由此标准曲线，根据测出的未知样品的A595值，即可查出未知样品的蛋白质含量。

    0.5mg牛血清蛋白/ml溶液的A595约为0.50。

  特点：

  （1）灵敏度高，其zui低蛋白质检测量可达1mg。这是因为蛋白质与染料结合后产生的颜色变化很大，蛋白质-染料复合物有高的消光系数，因而光吸收值随蛋白质浓度的变化比Lowry法要大得多。

  （2）测定快速、简便，只需加一种试剂。完成一个样品的测定，只需要5min左右。由于染料与蛋白质结合的过程大约只要2min即可完成，其颜色可以在1h内保持稳定，且在5min～20min之间，颜色的稳定性，因而*不用像Lowry法那样费时和严格地控制时间。

  （3）干扰物质少。如干扰Lowry法的K+、Na+、Mg2+离子，Tris缓冲液，蔗糖，甘油，巯基乙醇，EDTA等均不干扰此测定法。

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